Introducción
Los cultivos en los bancos de semillas de ECHO se seleccionan por su capacidad para crecer en condiciones difíciles y por su importancia potencial para el pequeño productor. Las semillas de ECHO se prueban anualmente para determinar los porcentajes de germinación, una medida de la viabilidad de las semillas. El porcentaje de germinación escrito en los paquetes de semillas de ECHO se basa en estas pruebas anuales. Se calcula a partir de una muestra y no puede garantizarse. Este artículo explica los factores que influyen en la germinación, basándose en información aportada por personal de ECHO y miembros de la red con experiencia en bancos y conservación de semillas. Puede verse otros factores que influyen en el éxito general de los cultivos más allá de la germinación, en el artículo Introducing a New Crop: Reasons why seeds fail [Introduciendo un nuevo cultivo: razones por las que fracasan las semilla] de EDN 104 [http://edn.link/x3wqdc].
Rasgos de la semilla
Las características de la semilla varían en dependencia del cultivo con el que se trabaje. Estas características pueden influir sobre la vida de almacenamiento y germinación de la semilla. Los atributos de las propias semillas están en gran medida fuera del control del agricultor, pero deben tenerse en cuenta durante la planificación.
Semillas ortodoxas y recalcitrantes
Las semillas recalcitrantes, como el zapote amarillo (Pouteria campechiana), el zapote negro (Diospyros nigra), el neem (Azadirachta indica), y la jaca o jackfruit (Artocarpus heterophyllus), no permanecen viables durante largos períodos de tiempo. En los cultivos con semillas recalcitrantes, éstas se cosechan y envían por correo frescas, pero deben sembrarse muy poco después de recibirlas. A menudo, los problemas de germinación se deben a otros factores además de la propia semilla, ya sea por razones ambientales o por las prácticas del productor.
Dormancia
Esté al tanto de potenciales cuestiones de dormancia con las semillas que siembre. Algunas semillas como el frijol alado (Psophocarpus tetragonolobus) y muchos otros frijoles (familia Fabaceae) tienen cubiertas seminales duras, lo que constituye una forma de dormancia o latencia externa. 1 La dormancia externa se supera mediante la escarificación de la semilla, la alteración de la cubierta seminal para dejar que el agua pase a través de ella de modo que pueda comenzar la germinación. Las técnicas de escarificación incluyen fricción con una lima, hacer cortes (Figura 1) y ablandamiento (con agua tibia o caliente) de la cubierta seminal (Motis, 2009).
Figura 1.Capa de cubierta seminal de frijol mellada con cortaúñas. Fuente: Stacy Swartz
Para escarificar las semillas más pequeñas, puede colocarlas en un recipiente cerrado con piedras y agitarlo para abrir la cubierta seminal o colocarlas sobre una superficie y raspar el otro lado con papel de lija. (Gilroy, 1986). Tenga cuidado de no dañar el embrión de la semilla. 2 Algunos mecanismos de la dormancia de las semillas no se comprenden plenamente. Varias especies de Annona (e.g., A. crassiflora, A. macroprophyllata, y A. purpurea) tienen mecanismos de dormancia externa o interna que pueden requerir un período de frío y/o ablandamiento de la cubierta seminala (da Silva et al., 2007; Ferreira et al., 2016).
Factores ambientales
Textura y humedad del suelo
Figura 2. Rodillo de agua sencillo para ayudar a aumentar el contacto semilla-suelo en suelos gruesos. Fuente: Tim Motis
Las semillas necesitan condiciones de humedad para que pueda producirse la germinación. La textura del suelo y el contenido de materia orgánica influyen en la capacidad de retención de agua de los suelos y, por tanto, en la germinación de las semillas. Un mal contacto entre la semilla y el suelo en suelos arenosos puede hacer que no haya una buena humedad para que la semilla pueda germinar. En términos ideales, la textura y la humedad del suelo deben ser tales que el suelo húmedo esté firmemente en contacto con la semilla. Después de sembrar las semillas en el suelo, puede compactar la tierra con las manos, los pies o un rodillo (Figura 2) para aumentar el contacto semilla a suelo. Hágalo con cuidado para evitar una compactación excesiva, que podría impedir la emergencia de las plántulas. Los suelos arcillosos son más propensos a exceso de compactación que los arenosos. Después de las lluvias, los suelos arcillosos pueden formar una costra en la superficie del suelo que dificulta que las nuevas plántulas lo atraviesen y puedan emerger. Los suelos arcillosos retienen el agua muy bien y tienen poros muy pequeños. Si hay demasiada agua alrededor de las semillas, pueden reblandecerse y pudrirse antes de que inicie el desarrollo radicular. Por el contrario, los suelos arenosos drenan bien, pero son más propensos que los arcillosos a secarse. Si cava surcos para colocar las semillas, puede agregar una enmienda rica en materia orgánica, como compost o humus de lombriz en el fondo del surco para ayudar a moderar la capacidad de retención de humedad del suelo alrededor de las semillas. La materia orgánica modera los problemas asociados tanto a los suelos finos (arcilla) como gruesos (arena).
pH del suelo
El pH ideal del suelo para la siembra de cultivos varía según la especie. El pH ideal del suelo para la mayoría de los cultivos es casi neutro (7.0), entre 6.5 (ligeramente ácido) y 7.5 (ligeramente alcalino). Algunos cultivos que crecen en suelos ácidos (pH menor de 5.5) incluyen el arroz (Oryza sativa), la yuca (Manihot esculenta), el mango (Mangifera indica), el marañón (Anacardium occidentale), los cítricos, la piña (Ananas comosus), el frijol caupí (Vigna unguiculata), la mora azul (Vaccinium spp.), y pastos seleccionados (FAO, 2023). Un valor de pH fuera del rango óptimo de un cultivo probablemente no impedirá que las semillas germinen, pero podría hacer más lenta la germinación. (Pérez-Fernández et al., 2006). Si no conoce el pH de su suelo, consulte el mapa de la FAO de ph de la capa vegetal (topsoil pH map). El pH del suelo puede aumentarse agregando cal, conchas trituradas o ceniza de madera, y puede disminuirse añadiendo compuestos que contengan azufre.
Salinidad del suelo
Los suelos salinos se encuentran en contextos áridos y semiáridos en el mundo. La alta salinidad del suelo reduce la germinación porque las altas concentraciones de sales en el agua alrededor de las semillas limitan la difusión del agua en la semilla (el proceso de imbibición), que es necesario para la germinación (Welbaum et al., 1990). Las variedades y especies de cultivos (Khajeh-Hosseini et al., 2003) difieren en el nivel de salinidad del suelo que pueden tolerar. Puede obtener una lista de cultivos que toleran suelos salinos y opciones de cultivo en suelos salinos en la Nota Técnica de ECHO 84: Conociendo los suelos afectados por sales [http://edn.link/tn-84].
Oxígeno
Figura 3. Zanja de tierra utilizada para dirigir y/o retener el agua. Fuente: Tim Motis
El embrión dentro de una semilla está vivo y respira, utiliza oxígeno y libera dióxido de carbono a medida que los depósitos de nutrientes se convierten en energía. En almacenamiento fresco y seco, la respiración de las semillas se mantiene al mínimo para preservarlas. Una vez expuesta al oxígeno, a una temperatura del aire cálida y a la humedad, la semilla empezará a respirar más rápido. Normalmente, los espacios porosos del suelo contienen aire que permite la transferencia de gases y la absorción de oxígeno para las semillas y la vida del suelo. Cuando los espacios porosos son muy pequeños o están llenos de agua, el oxígeno se vuelve limitado. Esto provoca que se detenga la respiración y la germinación en la mayoría de los cultivos. Las condiciones que limitan el oxígeno son consecuencia de un exceso de compactación o de agua. La compactación excesiva suele vincularse a un alto contenido de arcilla, un bajo contenido de materia orgánica y la ruptura de las partículas/estructura del suelo por un exceso de labranza. Las condiciones de humedad excesiva se deben a inundaciones, encharcamientos y drenaje deficiente (relacionados con la compactación y los puntos bajos de un campo). Los cultivos semi-acuáticos (arroz) y acuáticos (espinaca de agua; Ipomoea aquatica) toleran condiciones de inundación cuando maduran, pero pueden seguir siendo sensibles durante la germinación de la semilla. Se puede mitigar algunos de estos problemas aumentando el contenido de materia orgánica del suelo con mulch y la retención de los cultivos, reduciendo al mínimo la labranza, sembrando en camas elevadas y utilizando canales para dirigir o retener el agua en zonas de su campo (Figura 3).
Luz
Las semillas sin dormancia innata germinan después de exponerse a temperatura, agua y oxígeno adecuados, mientras que las semillas con dormancia innata requieren un estímulo adicional (Frankland y Taylorson, 1983). La luz es un estímulo potencial para la germinación que algunos cultivos necesitan para que ésta comience. Algunos cultivos que necesitan luz para germinar incluyen la lechuga, el apio, el eneldo y la cebolla. (Steil y Jauron, 2023).
La mayoría de los cultivos no necesitan luz para germinar, pero todos necesitan luz para que los brotes alcancen la elongación apropiada después de la germinación. Cuando las plantas se siembran en zonas con poca luz, se vuelven alargadas y delgadas (altas y con pocas hojas) porque buscan la luz. Esto estresa el cultivo y produce una estructura más débil del tallo. Para impulsar la germinación y un crecimiento sano, las semillas de hortalizas deben iniciarse en un contexto de vivero con luz moderada y luego trasladarse a pleno sol. Los cultivos de cereales y leguminosas deben sembrarse directamente en zonas a pleno sol.
Temperatura
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Figura 4. Pared de invernadero con tipo de cortina de plástico que se puede enrollar parcial o totalmente para moderar la temperatura y flujo de aire dentro del invernadero. Fuente: Tim Motis
En general, las semillas germinan a temperaturas cálidas, entre 20°C y 25°C (Gilroy, 1986).3 a mayoría de las semillas necesitan al menos 24°C para germinar, aunque las especies sensibles no germinarán si las temperaturas son ligeramente mayores o menores de un rango preferido (Ashworth, 2002). Las berenjenas y los pimientos germinan a temperaturas cercanas a los 27°C, que se encuentran en el rango alto para las semillas de lechuga, pero en el rango bajo para la espinaca malabar (que necesita 29°C). Las temperaturas deben mantenerse constantes durante todo el proceso de germinación, minimizando fluctuaciones grandes. En el campo, el suelo húmedo actúa como amortiguador natural de los cambios drásticos de temperatura, ya que los cambios en la temperatura del agua tardan mucho más que los cambios en la temperatura del aire. En un invernadero, cerrar las paredes por la noche para retener el calor o abrirlas durante el día para permitir la circulación del aire puede ayudar a moderar las temperaturas extremas (Figura 4).
Figura 5. Síntoma de ahogamiento (damping-off) en una plántula joven. Fuente: Eustacio Gonzales
Patógenos
Los hongos, las bacterias y otros microorganismos pueden causar pudrición o dañar las semillas de otras formas. Algunos de los patógenos más comunes son Fusarium y Phytophthora spp. Estos hongos causan pudrición que a menudo provocan el colapso de las plántulas (Figura 5). Las enfermedades fúngicas transmitidas por el suelo y el agua pueden dañar los tallos de las plántulas tiernas, haciendo que se marchiten y mueran. La mayoría de estos organismos prosperan en ambientes cálidos y húmedos, que también son ideales para la germinación de las semillas. En el vivero, rompa o retire las cubiertas seminales de cultivos como el zapote amarillo (Pouteria campechiana), el mango y el mamey sapote (Pouteria sapota) para evitar la pudrición prematura de la cubierta seminal antes de que emerja el embrión. Combine el riego frecuente (dado el pequeño volumen de las bandejas y contenedores de siembra) con un buen drenaje para ayudar a controlar los patógenos. En el campo, revise los puntos bajos en busca de enfermedades fúngicas y reemplace las plantas ante los primeros signos de infección. También puedes tratar las semillas con plaguicidas (naturales o sintéticos) antes de sembrarlas para mitigar las infecciones transmitidas por el suelo y las semillas. Muchas opciones sintéticas son difíciles de obtener para los pequeños productores. La Tabla 1 enumera algunas opciones de bajos recursos que se han probado para diversas plagas con éxito variable. Es probable que haya más opciones disponibles localmente, como las descritas por Sridhar et al. (2013). Pruebe las opciones locales de tratamiento de semillas en un pequeño subconjunto para probar la eficacia y minimizar el riesgo.
| Ingrediente activo | Plaga de control | Métodos | Eficacia | Fuente(s) |
|---|---|---|---|---|
| Gliricidia sepium | Patógenos transmitidos por semilla | Corte 1 kg de trozos de corteza, agregue agua para cubrir. Remoje la semilla en el líquido durante 12-14 horas. Deseche las semillas flotantes. | Eficaz para maíz (Zea mays). Se desconoce la eficacia en otros cultivos. | Stoll, 2000 |
| Vinagre | Patógenos transmitidos por semilla | Solución de ácido acético al 3%. Sumerja las semillas en solución y luego séquelas antes de sembrarlas o almacenarlas. El vinagre doméstico es de aproximadamente un 5%, lo que afecta la germinación. | Probado efectivamente para 14 cultivares comunes de huerto. | Gilbert, 2023 |
| Lejía | Patógenos transmitidos por semilla | Dilución de NaClO al 0.6%. Sumerja las semillas en la solución y luego séquelas antes de sembrarlas o almacenarlas. | Probado efectivamente para 14 cultivares comunes de huerto. | Gilbert, 2023 |
| Agua caliente | Patógenos transmitidos por semilla | Suspenda la malla o la bolsa de algodón con las semillas en agua caliente (debe estar a la temperatura adecuada) durante la cantidad de tiempo recomendada (específica de la especie). Retire y coloque en agua fría para detener el proceso de calentamiento. Séquelas antes de sembrarlas o almacenarlas. | Muy eficaz contra las especies Alternaria y Phoma. También buena eficacia contra Xanthomonas campestris. | Nega, 2003 |
| Azadirachtin (Neem) | Varios (micro-organismos, insectos, y patógenos) | Cubra las semillas en polvo seco de hoja de neem o en aceite de neem antes de sembrarlas. Las tasas varían según el material vegetativo utilizado (hojas, semilla, torta de semillas, etc.) | Variable basada en plaga objetivo. Pre-tratar semillas de arroz con solución de aceite de semilla de neem al 5% o 10% redujo de manera significativa el crecimiento y el desarrollo de dos plagas de insectos del arroz en su etapa larvaria. Extracto de hoja de neem (1.95 mg/ml) inhibió el crecimiento de Pythium spp. en contextos de laboratorio. | Kareem et al., 1989; Kareem et al., 2018 |
| Ceniza | Patógenos transmitidos por semilla | Aplicar de varias maneras a o con semillas antes de sembrarlas. | Control parcial efectivo (hasta un 42% en comparación con plaguicida comercial) en el maíz contra varios hongos transmitidos por la semilla y el tizón de la plántulas. Control variable de otras plagas registradas en fuentes bibliográficas. | Ekpo y Banjoko, 1994 |
| Ajo | Patógenos fúngicos | Extraiga el jugo de ajo y dilúyalo a una proporción de 1:1 a 1:5 (jugo a agua). Remoje las semillas en dilución 24 horas antes de sembrarlas. | Se han reportado propiedades antifúngicas efectivas para reducir los patógenos fúngicos hasta un 52% en semillas de trigo infectadas (Triticum sp.). Redujo eficazmente infección fúngica transmitida por semillas en arroz. | Perelló et al., 2013; Ahmed et al., 2013 |
| Té de humus de lombriz | Patógenos fúngicos | Varias diluciones de vermicompost acuoso (ya sea aireado o no) de 0.1 al 5%. | Por lo general se rocían extractos de compost de vermicultura sobre las hojas de las plantas como agente antifúngico foliar. Algunos investigadores han estudiado los efectos de los tratamientos de semillas con extractos y han encontrado que el té de vermicompost aireado ayudó eficazmente a controlar el Fusarium moniliforme en plántulas de arroz. | Sarma et al., 2010 |
| Fermentación | Patógenos transmitidos por semilla | Fermentar las semillas en pulpa/jugo de fruta madura durante 24 a 72 horas. Lavar y secar las semillas antes de guardarlas o sembrarlas. | Eficaz para algunas enfermedades transmitidas por semillas, pero no para otras. Informes variados para el control de Acidovorax citrulli en sandía (algunos informes que es eficaz, otros no). Ineficaz para controlar el virus del mosaico del tomate en dicha hortaliza. | Ge et al., 2021; Broadbent 1956; Hopkins, et al., 1996; Ashworth, 2002 |
| Aceite de tomillo | Patógenos transmitidos por semilla | For fungistatic effects: dilute thyme oil to 2% in water. Agitate seeds in solution for 5 minutes. Dry before sowing or storing. For bacterial disinfection: dilute thyme oil to 1% and treat for 0.5 hours. | Muy eficaz contra Xanthomonas campestris pv. campestris, Clavibacter michiganensis subsp. michiganensis, Alternaria dauci y Botrytis aclada, Aspergillus flavus. No tienen efecto negative sobre la germinación. | Nakada-Freitas, 2022; Wolf, 2008 |
| Vapor de agua aireado | Patógenos transmitidos por semilla | Para efectos fungistáticos: diluya el aceite de tomillo al 2% en agua. Agite las semillas en solución durante 5 minutos. Séquelas antes de sembrarlas o almacenarlas. Para la desinfección bacteriana: diluya el aceite de tomillo al 1% y trate las semillas durante media hora. | Eficaz contra varias especies de Fusarium, Drechslera, y Alternaria. Muy eficaz contra Magnaporthe grisea, Cochliobolus miyabeanus, and y fujikuroi en arroz. Eficaz contra Xanthomonas campestris, Botrytis aclada, Stemphylium, Septoria, Ascochyta pisi, Phoma medicaginis, y Pinodella. | Forsberg, 2004 |
| Bicarbonato de soda (bicarbonato sódico o de sosa) | Patógenos fúngicos | Remoje las semillas en una dilución de 2:1 a 3:1 de bicarbonato de soda: riegue antes de sembrarlas en el campo. | Tiene una amplia efectividad contra hongos. Investigadores han verificado la eficacia en cinco especies diferentes de hongos transmitidos por semilla de soya y frijol caupí. | Kareem et al., 2018; Afolabi y Kareem, 2018 |
Depredadores de semillas
Los pájaros, los roedores, las hormigas, los ciempiés, los gorgojos y otras plagas consumen semillas. Usted puede tratar las semillas con plaguicidas (naturales o sintéticos) antes de sembrarlas para detener a algunos depredadores de semillas. Consulte la tabla 1 para ver algunas ideas. Las plagas de los cereales, como los gorgojos del arroz, el frijol y el maíz, se alimentan de las semillas almacenadas y pueden dañar el embrión o las estructuras de almacenamiento de nutrientes de la semilla. Puede ver opciones de control de plagas en semillas almacenadas en EDN 158.
En EDN 104, Motis (2009) menciona lo siguiente:
Quizás necesite construir cercos fuertes para proteger las plantaciones. En áreas donde no se puede excluir a los pollos, considere trasplantar plantas más establecidas (p. ej., en ECHO enraizamos esquejes de caña de azúcar en macetas antes de trasplantarlos donde hay pollos presentes), o colocar obstáculos como ramas de palmeras en las camas de los huertos o alrededor de la base de las plantas.
Si existen métodos para el control de insectos aceptables de bajo costo sería ventajoso monitorear la actividad de los insectos e intervenir de acuerdo a lo necesario para mantener la infestación en un nivel manejable. Es sabio decidir con anticipación el nivel de insumos e intervención que usted dedicará a un cultivo en particular. Los árboles frutales, por ejemplo, ameritarían mucho más atención que un cultivo para forraje.
Puede encontrar más información e ideas sobre el manejo de plagas en la Nota Técnica de ECHO 98 sobre Manejo Integrado de Plagas.
Prácticas agronómicas
Profundidad de siembra de la semilla
Otro elemento importante para que la semilla germine o que las plántulas no prosperen es la profundidad a la que se siembre la semilla, ya sea a demasiada profundidad o demasiado superficiales. Si las semillas se siembran a demasiada profundidad, es posible que no contengan suficiente energía para empujar al brote fuera del suelo antes de agotar sus reservas de nutrientes (endospermo). Si las semillas se siembran a muy poca profundidad, es posible que las raíces no se anclen a suficiente profundidad o que las semillas se sequen con facilidad. Como regla general, debe sembrar las semillas a una profundidad equivalente a tres a cuatro veces la anchura de la semilla (Gilroy, 1986). Las semillas pequeñas necesitan poca o ninguna cobertura del suelo, pero son extremadamente vulnerables a la desecación, de modo que asegúrese de regarlas con frecuencia durante sus primeras semanas de vida. Las semillas más grandes tienen mayor cantidad de energía para empujar el primer brote (plúmula) a través del suelo y en el aire por encima del suelo. La orientación de la semilla que se siembra no es vital puesto que las semillas sienten la gravedad en forma innata y enviarán brotes hacia arriba y raíces hacia abajo.
Duración del almacenamiento y sus condiciones (paquete enviado vs. cuando se siembran las semillas; lapso de tiempo entre la apertura del paquete y la siembra)
Procure sembrar las semillas pronto después de abrir el recipiente o paquete que las contiene. Una vez abierto el recipiente, la humedad puede afectar negativamente la viabilidad de las semillas. Si almacena las semillas en condiciones de calor o humedad, la viabilidad disminuirá con rapidez, y las semillas podrían morir o verse comprometidas en poco tiempo. Si no va a utilizar todas las semillas en una sola siembra, debe guardarlas en un recipiente bien sellado (hermético) para excluir la humedad. Coloque las semillas no utilizadas en recipientes herméticos mientras aún estén secas, pues el sellado hermético de semillas húmedas hace que les salga moho. La práctica del sellado hermético puede optimizarse combinándola con el sellado al vacío y/o desecantes. El sellado al vacío extrae el aire del recipiente, reduciendo la humedad y el oxígeno en el mismo; el oxígeno reducido, a su vez, hace que tanto la respiración como la actividad de las plagas de insectos sean más lentas. Véase más información sobre el sellado al vacío en la Nota Técnica de ECHO 93 Opciones de empaque al vacío para almacenar semillas. Los desecantes, como el arroz tostado, absorben la humedad, lo que ayuda a mantener secas las semillas en recipientes que necesitan abrirse de vez en cuando (p. ej., para sacar algunas semillas para sembrarlas). Las especies varían en cuanto a su vida de anaquel o vida útil en almacenamiento. La vida de almacenamiento de las semillas de lechuga o de melón no es la misma que la del maíz o los frijoles. Véase más información y opciones para el almacenamiento de semillas, en la Nota de Buenas Prácticas de ECHO 5: Almacenamiento de Semillas en Los Trópicos.
Riego
Regar demasiado, demasiado poco o en forma irregular puede afectar la germinación. Tras la siembra inicial, dejar que la tierra se seque puede matar las plántulas emergentes. Es esencial un riego constante con un drenaje adecuado. Las semillas deben permanecer húmedas pero no saturadas durante la germinación. Algunos cultivos, como el frijol espada (Canavalia ensiformis), pueden germinar con muy poca lluvia o riego, mientras que otros, como la calabaza y el calabacín (Cucurbitaceae), requieren un suministro considerable de agua 4 para que la germinación sea un éxito. Las semillas de estos cultivos podrían remojarse en agua antes de sembrarlas para ayudarlas a la absorción de agua (imbibición; Gilroy, 1986).
Variabilidad en las condiciones de vivero
Figura 6. Bandeja de siembra con varias especies y éxito de germinación variable por especie. Fuente: Holly Sobetski
Cuando se trabaja en un vivero, la gente a menudo optimiza el espacio de la bandeja sembrando dos o más cultivos en cada bandeja almaciguera. Aunque esto ahorra recursos, los dos cultivos pueden tener necesidades diferentes de luz y humedad, lo que provoca una germinación más pobre para uno o más cultivos en la bandeja (Figura 6). Si se siembran dos o más especies en la misma bandeja, asegúrese de que tengan necesidades y patrones de crecimiento similares.
Manejo post-cosecha de la semilla
La germinación y el éxito de las plántulas pueden alterarse por una mala manipulación post-cosecha de las semillas después de la cosecha durante la producción. Si el productor manipuló las semillas sin cuidado durante la cosecha, la trilla y el aventado, o la limpieza, la cubierta seminal (pericarpio) puede haberse agrietado o dañado, dejando que la humedad entre en la semilla y disminuyendo la vida útil y el vigor de la misma. Usted debería recibir las semillas de los proveedores en forma segura y puntual. Las semillas deben estar completamente limpias, libres de pulpa de fruta que puede pudrirse y causar infecciones fúngicas, y libres de semillas de malezas o paja.
Evaluación de la calidad de la semilla
Viabilidad de la semilla
Figura 7. Pruebas sencillas de germinación de frijoles utilizando una toalla de papel húmeda (izquierda) o sembrando directamente en el suelo (derecha). Fuente: Stacy Swartz
La viabilidad de las semillas es una medida de cuántas semillas están vivas y se relaciona con el número de semillas que podrían convertirse en plantas productivas en condiciones de campo agrícola (Bicksler, 2011). Cuanto mayor sea la viabilidad de sus semillas, menos semillas se necesitarán para establecer el número deseado de plantas en el campo o en el vivero. La manera más común de evaluar la viabilidad es mediante una prueba de germinación (Figura 7).
Vigor de la semilla
Figura 8. Semillas malformadas de okra (Abelmoschus esculentus) con brotes que emergen antes de la raíz. Fuente: Stacy Swartz
El vigor de la semilla se refiere a la capacidad general de las semillas para crecer bien bajo una serie de condiciones y estreses del campo. Esto puede evaluarse, en parte, al registrar el porcentaje de germinación cada día y anotar el número de días que pasen hasta alcanzar el 50% de germinación. Otro indicador del vigor de la semilla es el porcentaje de plántulas que son normales. Las plántulas normales no están atrofiadas y tienen raíces y brotes bien desarrollados (Figura 8). Es posible hacer pruebas de germinación en el suelo de las parcelas de los productores, pero esto no siempre es práctico y los factores relacionados con enfermedades y plagas pueden dificultar la interpretación de los resultados. Pruebe la germinación de las semillas almacenadas periódicamente (al menos una vez al año) para evaluar su viabilidad a través del tiempo. Esto le indicará el ritmo al que se deteriora la vitalidad de las semillas. Véase más detalles sobre cómo hacer pruebas sencillas de germinación en ECHO Asia Note 11 [http://edn.link/an11].
¿Qué falló? Tabla de diagnóstico
| Problema | Potential cause |
|---|---|
| No brota | Semilla no viable, enferma, sembrada a demasiada profundidad, con demasiada agua o con poca agua |
| Tarda en brotar | Tierra demasiado fría, no tiene suficiente agua |
| Las plántulas están amarillas y son alargadas | Muy poca luz, demasiado calor |
| Las plántulas son alargadas | Demasiada agua, muy poca luz |
| Las plántulas colapsan en la línea del suelo | Ahogamiento (damping-off) , inducido por la poca luz y el suelo que está demasiado caliente o húmedo |
| Las plántulas están atrofiadas | Muy poca agua, áfidos/pulgones |
| Las plántulas están saludables pero crecen lentamente | No hay suficiente espacio para las raíces |
Referencias:
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Ahmed, M., M. Hossain, K. Hassan, y C.K. Dash. 2013. Efficacy of Different Plant Extract on Reducing Seed Borne Infection and Increasing Germination of Collected Rice Seed Sample [Eficacia de diferentes extractos vegetales para reducir infecciones transmitidas por las semillas y aumentar la germinación de muestras de semillas de arroz recolectadas]. Universal Journal of Plant Science, 1(3):66-73
Ashworth, S. 2002. Seed to Seed: Seed Saving and Growing Techniques for Vegetable Gardeners [De semilla a semilla: Técnicas de conservación y cultivo de semillas para horticultores]. Seed Savers Exchange.
Bicksler, A.J. 2011. Testing Seed Viability Using Simple Germination Tests [Probar la viabilidad de las semillas usando pruebas sencillas de germinación]. Notas ECHO Asia no. 11.
da Silva, E.A.A, D.L.B. de Melo, A.C. Davide, N. de Bode, G.B. Abrue, J.M.R Faria, and H.W.M. Hilhorst. 2007. Germination Ecophysiology of Annona crassiflora seeds [Ecofisiología de germinación de semillas de Annona crassiflora]. Annals of Botany, 99(5):823-830.
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Ekpo, E.J.A., y K.M. Banjoko. 1994. Efficacy of Fernasan D and wood ash in the control of seed-borne fungi, pre-emergence mortality and seedling blight of maize [Eficacia de Fernasan D y ceniza de madera en el control de hongos transmitidos por semillas, mortalidad en preemergencia y tizón de las plántulas de maíz]. Discovery and Innovation, 6(1):84-88.
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