Introduction
Les cultures des banques de semences de ECHO sont sélectionnées pour leur capacité à pousser dans des conditions de croissance difficiles et pour leur importance potentielle pour le petit exploitant. Les semences de ECHO sont testées chaque année pour déterminer leur pourcentage de germination, une mesure de la viabilité des semences. Le pourcentage de germination écrit sur les paquets de semences de ECHO est basé sur ce test annuel. Il est calculé à partir d’un échantillon et ne peut être garanti. Cet article explique les facteurs qui ont un impact sur la germination, en s’appuyant sur les contributions du personnel de ECHO et des membres du réseau ayant une expérience dans les banques de semences et la conservation des semences. Pour des facteurs supplémentaires qui ont un impact sur le succès global des cultures au-delà de la germination, voir l’article Introducing a New Crop: Reasons why seeds fail [Présentation d’une nouvelle culture: Raisons pour lesquelles les semences ne poussent pas] de EDN 104 [http://edn.link/x3wqdc].
Les caractéristiques des semences
Les caractéristiques des semences varient en fonction de la culture avec laquelle vous travaillez. Ces caractéristiques peuvent avoir un impact sur la durée de conservation et la germination des semences. Les attributs des semences elles-mêmes sont en grande partie hors de votre contrôle, mais doivent être pris en compte lors de la planification.
Les semences orthodoxes et récalcitrantes
Les semences récalcitrantes, comme le canistel (Pouteria campechiana), la sapote noire (Diospyros nigra), le neem (Azadirachta indica) et le jacquier (Artocarpus heterophyllus), ne restent pas viables pendant de longues périodes. Les cultures contenant des semences récalcitrantes sont récoltées et expédiées fraîches, mais doivent être plantées très rapidement après leur réception. Souvent, les problèmes de germination sont causés par d’autres facteurs que la semence elle-même, soit pour des raisons environnementales, soit pour des raisons de pratiques agricoles.
La dormance
Soyez conscient des problèmes potentiels de dormance avec les semences que vous semez. Certaines semences telles que le haricot ailé (Psophocarpus tetragonolobus) et de nombreuses autres semences de haricot (famille des Fabaceae) ont un tégument dur qui est une forme de dormance externe.1 La dormance externe est surmontée par la scarification des graines, la modification du tégument pour permettre à l’eau de le traverser afin que la germination puisse commencer. Les techniques de scarification des graines comprennent le limage, l’entaille (Figure 1) et le ramollissement (avec de l’eau tiède ou chaude) du tégument (Motis, 2009).
Figure 1. Tégument d’un haricot entaillé avec un coupe-ongles. Source: Stacy Swartz
Pour scarifier les graines plus petites, vous pouvez les placer dans un récipient fermé avec des roches/pierres et le secouer pour ouvrir le tégument ou les mettre sur une surface et gratter l’autre côté avec du papier de verre (Gilroy, 1986). Veillez à ne pas endommager l’embryon de la graine. 2 Certains mécanismes de dormance des graines ne sont pas entièrement compris. Plusieurs espèces d’Annona ont des mécanismes de dormance externes ou internes qui peuvent nécessiter une dormance froide et/ou un ramollissement du tégument, comme A. crassiflora, A. macroprophyllata, et A. purpurea (da Silva et al., 2007; Ferreira et al., 2016).
Facteurs environnementaux
Texture et humidité du sol
Figure 2. Rouleau à eau simple pour aider à augmenter le contact graine-sol dans les sols grossiers. Source: Tim Motis
Les semences ont besoin de conditions humides pour que la germination ait lieu. La texture du sol et la teneur en matière organique ont un impact sur la capacité de rétention d’eau des sols et donc sur la germination des semences. Un mauvais contact entre la graine et le sol dans les sols sablonneux peut causer une humidité insuffisante pour la germination des semences. Idéalement, la texture et l’humidité du sol devraient être telles que le sol humide soit fermement en contact avec la graine. Après avoir semé des graines dans le sol, vous pouvez compacter le sol avec les mains, les pieds ou un rouleau (Figure 2) pour augmenter le contact graine-sol. Faites-le doucement pour éviter un compactage excessif, qui pourrait empêcher la levée des semis. Les sols argileux sont plus sujets à un compactage excessif que les sols sablonneux. Après des épisodes de pluie, les sols argileux peuvent également former une croûte à la surface du sol qui rend difficile aux nouveaux semis de pousser. Les sols argileux retiennent l’eau très étroitement et ont de très petits pores. Si trop d’eau entoure les graines, elles peuvent devenir trop molles et pourrir avant de faire sortir des racines. À l’inverse, les sols sablonneux drainent bien mais sont plus susceptibles que l’argile de se dessécher. Si vous creusez des sillons pour y placer des graines, vous pouvez placer un amendement riche en matière organique comme du compost ou des déjections de vers au fond du sillon pour aider à modérer la capacité de rétention d’humidité du sol autour des graines. La matière organique atténue les problèmes associés aux sols fins (argile) et grossiers (sable).
Le pH du sol
Le pH idéal du sol pour la croissance des cultures varie selon les espèces. Le pH idéal du sol pour la plupart des cultures est presque neutre (7,0), entre 6,5 (légèrement acide) et 7,5 (légèrement alcalin). Certaines cultures qui poussent dans des sols acides (pH inférieur à 5,5) comprennent le riz (Oryza sativa), le manioc (Manihot esculenta), la mangue (Mangifera indica), la noix de cajou (Anacardium occidentale), les agrumes, l’ananas (Ananas comosus), le niébé (Vigna unguiculata), les myrtilles (Vaccinium spp.) et certaines graminées (FAO, 2023). Une valeur de pH en dehors de la plage optimale d’une culture n’empêchera probablement pas les graines de germer, mais pourrait ralentir la germination (Pérez-Fernández et al., 2006). Si vous ne connaissez pas le pH de votre sol, consultez la carte du pH de la couche arable de la FAO. Le pH du sol peut être augmenté en ajoutant de la chaux, des coquilles broyées ou de la cendre de bois et peut être diminué en ajoutant des composés contenant du soufre.
La salinité du sol
Les sols salins se trouvent dans des contextes arides et semi-arides à l’échelle mondiale. Une salinité élevée du sol diminue la germination car les concentrations élevées de sels dans l’eau autour des graines limitent la diffusion de l’eau dans la graine (le processus d’imbibition) qui est nécessaire à la germination (Welbaum et al., 1990). Les variétés de cultures (Khajeh-Hosseini et al., 2003) et les espèces diffèrent par le niveau de salinité du sol qu’elles peuvent tolérer. Pour une liste des cultures qui tolèrent les sols salins et des options pour la culture dans des sols salins, voir la Note technique de ECHO n° 84 : Comprendre les sols affectés par le sel [http://edn.link/tn-84].
L’oxygène
Figure 3. Rigole de terre utilisée pour diriger et/ou retenir l’eau. Source: Tim Motis
L’embryon à l’intérieur d’une graine est vivant et respire, utilisant de l’oxygène et libérant du dioxyde de carbone lorsque les réserves de nourriture sont converties en énergie. Dans un stockage frais et sec, la respiration des graines est réduite au minimum pour préserver les graines. Une fois exposée à l’oxygène, à la température de l’air chaud et à l’humidité, une graine commencera à respirer plus rapidement. Normalement, les espaces poreux du sol contiennent de l’air qui permet le transfert de gaz et l’absorption d’oxygène pour les graines et la vie du sol. Lorsque les espaces poreux sont très petits ou remplis d’eau, l’oxygène devient limité. Cela provoque l’arrêt de la respiration et de la germination pour la plupart des cultures. Les conditions limitant l’oxygène sont la conséquence d’un compactage excessif ou d’eau. Le compactage excessif est souvent associé à une forte teneur en argile, à une faible teneur en matière organique et à la dégradation des particules/structures du sol avec un travail excessif du sol. Des conditions trop humides sont causées par les inondations, l’engorgement et un mauvais drainage (lié au compactage et aux dépressions dans un champ). Les cultures semi-aquatiques (riz) et aquatiques (épinards d’eau; Ipomoea aquatica) tolèrent les conditions d’inondation à maturité mais peuvent encore être sensibles pendant la germination des graines. Vous pouvez atténuer certains de ces problèmes en augmentant la teneur en matière organique du sol grâce au paillage et à la rétention des cultures, en minimisant le travail du sol, en plantant sur des plates-bandes surélevées et en utilisant des rigoles pour diriger ou retenir l’eau dans des zones de votre champ (Figure 3).
Lumière
Les graines sans dormance innée germent après avoir été exposées à une température, à de l’eau et à de l’oxygène adéquats, tandis que les graines à dormance innée nécessitent un stimulus supplémentaire (Frankland et Taylorson, 1983). La lumière est un stimulus potentiel pour la germination dont certaines cultures ont besoin pour que la germination commence. Les cultures qui ont besoin de lumière pour germer comprennent la laitue, le céleri, l’aneth et l’oignon (Steil et Jauron, 2023).
La plupart des cultures n’ont pas besoin de lumière pour germer, mais toutes les cultures ont besoin de lumière pour un bon allongement des pousses après la germination. Lorsque les plantes sont cultivées dans des zones trop peu éclairées, elles deviennent longues (grandes avec de petites feuilles) car elles recherchent la lumière. Cela stresse la culture et se traduit par une structure de tige plus faible. Pour encourager la germination et une croissance saine, les semences de légumes doivent être démarrées dans un contexte de pépinière avec une lumière modérée puis déplacées en plein soleil. Les céréales et les légumineuses doivent être semées directement dans les zones en plein soleil.
La température
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Figure 4. Mur de serre avec revêtement en plastique qui peut être partiellement ou complètement enroulé pour modérer la température et la circulation d’air à l’intérieur de la serre. Source: Tim Motis
En général, les graines germent à des températures chaudes entre 20°C et 25°C (Gilroy, 1986).3 La plupart des graines ont besoin d’au moins 24 °C pour germer, bien que les espèces sensibles ne germent pas si les températures sont légèrement supérieures ou inférieures à une plage préférée (Ashworth, 2002). Les aubergines et les poivrons germent à des températures d’environ 27 °C, ce qui est dans la fourchette haute pour les graines de laitue mais dans la fourchette basse pour les épinards Malabar (qui nécessitent 29 °C). Les températures doivent rester constantes tout au long du processus de germination, minimisant les grandes fluctuations. Sur le terrain, le sol humide agit comme un tampon naturel contre les changements de température drastiques, car les changements de température de l’eau prennent beaucoup plus de temps que les changements de température de l’air. Dans une serre, fermer les murs la nuit pour retenir la chaleur ou les ouvrir le jour pour permettre la circulation de l’air peut aider à modérer les températures extrêmes (Figure 4).
Figure 5. Symptôme de fonte des semis chez un jeune plant. Source: Eustacio Gonzales
Les agents pathogènes
Les champignons, les bactéries et d’autres micro-organismes peuvent provoquer la pourriture ou endommager les graines d’autres manières. Certains des agents pathogènes les plus courants sont Fusarium et Phytophthora spp. Ces champignons causent la pourriture qui entraîne souvent l’effondrement des semis (Figure 5). Les maladies fongiques transmises par le sol et l’eau peuvent endommager les tiges des semis tendres, les faisant flétrir et mourir. La plupart de ces organismes prospèrent dans des environnements chauds et humides qui sont également idéaux pour la germination des semences. Dans la pépinière, cassez ou enlevez les téguments de cultures telles que le canistel, la mangue et la sapote mamey (Pouteria sapota) pour éviter la pourriture prématurée du tégument avant la poussée de l’embryon. Combinez un arrosage fréquent (compte tenu du faible volume des bacs et des contenants de plantation) avec un bon drainage pour aider à contrôler les agents pathogènes. Sur le terrain, surveillez les zones basses pour détecter les maladies fongiques et remplacez les plants dès les premiers signes d’infection. Vous pouvez également traiter les semences avec des pesticides (naturels ou synthétiques) avant le semis pour atténuer les infections transmises par le sol et les semences. De nombreuses options synthétiques sont difficiles à obtenir pour les petits exploitants agricoles. Le tableau 1 énumère certaines options à faibles ressources qui ont été essayées pour divers ravageurs avec un succès variable. D’autres options sont probablement disponibles localement, telles que celles décrites par Sridhar et al. (2013). Essayez les options locales de traitement des semences sur un petit sous-ensemble pour tester l’efficacité et minimiser les risques.
| Ingrédient actif | Lutte antiparasitaire | Méthodes | Efficacité | Source(s) |
|---|---|---|---|---|
| Gliricidia sepium | Pathogènes transmis par les semences | Hacher 1 kg d’écorce, ajouter de l’eau pour couvrir. Faire tremper les graines dans le liquide pendant 12 à 14 heures. Jeter les graines flottantes. | Efficace pour le maïs (Zea mays). Efficacité non connue sur d’autres cultures. | Stoll, 2000 |
| Vinaigre | Pathogènes transmis par les semences | Solution d’acide acétique à 3 %. Tremper les graines dans la solution puis sécher avant de semer ou de stocker. Le vinaigre domestique est d’environ 5%, ce qui affecte la germination. | Testé efficacement pour 14 cultivars de jardin courants. | Gilbert, 2023 |
| Eau de Javel | Pathogènes transmis par les semences | Dilution de NaOCl à 0,6 %. Tremper les graines dans la solution puis sécher avant de semer ou de stocker. | Testé efficacement pour 14 cultivars de jardin courants. | Gilbert, 2023 |
| Eau chaude | Pathogènes transmis par les semences | Suspendre un filet ou un sac de graines en coton dans de l’eau chaude (doit être à une température appropriée) pendant la durée recommandée (spécifique à l’espèce). Retirer et placer dans de l’eau froide pour arrêter le processus de chauffage. Séchez avant de semer ou de stocker. | Très efficace contre les espèces Alternaria et Phoma. Bonne efficacité également contre Xanthomonas campestris. | Nega, 2003 |
| Azadirachtin (Neem) | Divers (micro-organismes, insectes et pathogènes) | Enrober les graines de poudre de feuilles de neem séchées ou d’huile de neem avant le semis. Les taux varient en fonction du matériel végétal utilisé (feuilles, noyau, tourteau, etc.) | Variable en fonction du ravageur ciblé. Le prétraitement des graines de riz avec une solution d’huile de graines de neem à 5% ou 10% a considérablement réduit la croissance et le développement de deux insectes ravageurs du riz à leur stade larvaire. L’extrait de feuille de Neem (1,95 mg/ml) a inhibé la croissance de Pythium spp. dans des contextes de laboratoire. | Kareem et al., 1989; Kareem et al., 2018 |
| Cendre | Pathogènes transmis par les semences | Appliquer de diverses manières sur ou avec les graines avant le semis. | Contrôle partiel efficace (jusqu’à 42 % par rapport aux pesticides commerciaux) du maïs contre plusieurs champignons transmis par les semences et la brûlure des semis. Contrôle variable d’autres ravageurs notés dans la littérature. | Ekpo and Banjoko, 1994 |
| Ail | Pathogènes fongiques | Extraire le jus d’ail et le diluer dans l’eau à raison de 1:1 à 1:5 (jus pour eau). Faire tremper les graines dans la dilution 24 heures avant le semis. | Les propriétés antifongiques ont été déclarées efficaces dans la réduction les agents pathogènes fongiques jusqu’à 52 % dans les semences de blé (Triticum sp.) infectées. Réduit efficacement l’infection fongique des semences dans le riz. | Perelló et al., 2013; Ahmed et al., 2013 |
| Thé de ver | Pathogènes fongiques | Diverses dilutions de lombricompost aqueux (qu’il soit aéré ou non) de 0,1 à 5 %. | Les extraits de compost de lombriculture sont le plus souvent pulvérisés sur les feuilles des plantes comme agent antifongique foliaire. Certains chercheurs se sont penchés sur les effets des traitements des semences avec des extraits et ont découvert que le thé de lombricompost aéré aidait efficacement à contrôler Fusarium moniliforme dans les semis de riz. | Sarma et al., 2010 |
| Fermentation | Pathogènes transmis par les semences | Faire fermenter les graines dans la pulpe/jus de fruits mûrs pendant 24 à 72 heures. Laver et sécher les graines avant de les stocker ou de les semer. | Efficace pour certaines maladies transmises par les semences, mais pas pour d’autres. Rapports variés pour contrôler Acidovorax citrulli dans la pastèque (certains rapports sont efficaces, d’autres non). Inefficace pour contrôler le virus de la mosaïque de la tomate dans les tomates. | Ge et al., 2021; Broadbent 1956; Hopkins, et al., 1996; Ashworth, 2002 |
| Huile de thym | Pathogènes transmis par les semences | Pour les effets fongistatiques : diluer l’huile de thym à 2% dans l’eau. Agiter les graines en solution pendant 5 minutes. Séchez avant de semer ou de stocker. Pour la désinfection bactérienne: diluer l’huile de thym à 1 % et traiter pendant 0,5 heure. | Très efficace contre Xanthomonas campestris pv. campestris, Clavibacter michiganensis subsp. michiganensis, Alternaria dauci et Botrytis aclada, Aspergillus flavus. Aucun effet négatif sur la germination. | Nakada-Freitas, 2022; Wolf, 2008 |
| Vapeur aérée | Pathogènes transmis par les semences | Exposez les graines à la vapeur aérée à 85%-95% d’humidité. La température et la durée idéales varient selon le type de semence et l’agent pathogène ciblé. Des températures comprises entre 50 et 60°C pendant des durées d’environ 5 minutes étaient courantes dans la littérature citée. Refroidir rapidement et sécher avant de semer ou de stocker. | Efficace contre diverses espèces de Fusarium, Drechslera et Alternaria. Très efficace contre Magnaporthe grisea, Cochliobolus miyabeanus et Gibberella fujikuroi dans le riz. Efficace contre Xanthomonas campestris, Botrytis aclada, Stemphylium, Septoria, Ascochyta pisi, Phoma medicaginis et Pinodella. | Forsberg, 2004 |
| Bicarbonate de soude (bicarbonate de sodium) | Pathogènes fongiques | Faire tremper les graines dans une dilution 2:1 à 3:1 de bicarbonate de soude : arroser avant de semer au champ. | A une large efficacité contre les champignons. Les chercheurs ont vérifié l’efficacité de cinq espèces différentes parmi les champignons transmis par les graines de soja et de niébé. | Kareem et al., 2018; Afolabi and Kareem, 2018 |
Les prédateurs des semences
Les oiseaux, les rongeurs, les fourmis, les mille-pattes, les charançons et autres ravageurs consomment les semences. Vous pouvez traiter les semences avec des pesticides (naturels ou synthétiques) avant le semis pour dissuader certains prédateurs de semences. Voir le tableau 1 pour quelques idées. Les ravageurs des céréales tels que les charançons du riz, des haricots et du maïs se nourrissent de semences stockées et peuvent endommager l’embryon ou les structures de stockage des aliments dans les graines. Pour les options de lutte contre les ravageurs dans les semences stockées, voir EDN 158.
Dans EDN 104, Motis (2009) Motis (2009) mentionne ce qui suit:
Vous devrez peut-être construire des clôtures solides pour protéger les plantations. Dans les zones où les poulets ne peuvent pas être exclus, envisagez de repiquer les plants plus établis (par exemple, à ECHO, nous enracinons les boutures de canne à sucre dans des pots avant de les repiquer là où les poulets sont présents), ou de placer des obstacles tels que des branches de palmier sur les plates-bandes ou autour des pieds des plants.
S’il existe des méthodes de lutte contre les insectes peu coûteuses et acceptées par les agriculteurs, il pourrait être avantageux de surveiller l’activité des insectes et d’intervenir au besoin pour maintenir les infestations à un niveau gérable. Il est sage de décider à l’avance du niveau d’intrants et d’intervention que vous consacrerez à une culture particulière. Les arbres fruitiers, par exemple, mériteraient beaucoup plus de soins qu’une culture fourragère.
Pour plus d’informations et d’idées sur la lutte antiparasitaire, voir la Note Technique de ECHO n° 98 sur la lutte intégrée.
Pratiques agronomiques
La profondeur de semis
Une autre cause importante de germination des semences ou de mauvaise germination des semis comprend le semis de graines trop profondes ou trop peu profondes. Si les graines sont semées trop profondément, la graine peut ne pas contenir assez d’énergie pour pousser la pousse hors du sol avant qu’elle n’épuise ses réserves de nourriture (endosperme). Si les graines sont semées trop peu profondément, les racines peuvent ne pas être ancrées assez profondément ou les graines peuvent se dessécher facilement. En règle générale, vous devez semer les graines à une profondeur de trois à quatre fois la largeur de la graine (Gilroy, 1986). Les petites graines ont besoin de peu ou pas de couverture de sol, mais sont extrêmement vulnérables au dessèchement, alors assurez-vous d’arroser fréquemment pendant les premières semaines de la vie de ces graines. Les graines plus grosses ont une plus grande quantité d’énergie pour pousser la première pousse (plumule) du sol et dans l’air au-dessus du sol. L’orientation de la graine semée n’est pas vitale car les graines sentent naturellement la gravité et enverront les pousses vers le haut et les racines vers le bas.
Durée de stockage et conditions de stockage (envoi du paquet par rapport au temps du semis; le temps entre l’ouverture du paquet et le semis)
Efforcez-vous de semer peu de temps après avoir ouvert un contenant de semences. Une fois le contenant ouvert, l’humidité peut nuire à la viabilité des semences. Si vous stockez les semences dans des conditions chaudes ou humides, la viabilité diminuera rapidement et les semences pourraient mourir ou être compromises en peu de temps. Si vous n’utilisez pas toutes les semences en semis unique, vous devez les stocker dans un récipient hermétiquement fermé (scellé) pour exclure l’humidité. Placez les semences inutilisées dans des récipients scellés pendant qu’elles sont encore sèches, car le scellage hermétique de semences humides entraînera la moisissure. La pratique du scellage hermétique peut être optimisée en le combinant avec un scellage sous vide et/ou des déshydratants. Le scellage sous vide chasse l’air d’un récipient, diminuant l’humidité et l’oxygène dans le récipient ; la réduction de l’oxygène, à son tour, ralentit la respiration et l’activité des insectes nuisibles. Pour plus d’informations sur le scellage sous vide, consultez la Note Technique de ECHO n° 93 : Vacuum-Sealing Options for Storing Seeds [Options de scellage sous vide pour le stockage des semences]. Les déshydratants comme le riz grillé absorbent l’humidité, aidant à garder les semences sèches dans les récipients qui doivent être ouverts de temps en temps (par exemple, pour retirer quelques semences pour les semer). Les espèces varient en termes de durée de conservation ou de durée de vie en stockage. La durée de conservation des semences de laitue ou de melon n’est pas la même que celle du maïs ou des haricots. Pour plus d’informations et d’options pour le stockage des semences, voir la ECHO Pratiques Exemplaires n°5: Conservation des semences dans les régions tropicales.
L’arrosage
Arroser trop, trop peu ou de manière incohérente peut avoir un impact sur la germination. Après le semis initial, laisser sécher le sol peut tuer les semis qui émergent. Un arrosage constant avec un drainage adéquat est essentiel. Les graines doivent rester humides mais pas saturées pendant la germination. Certaines cultures telles que le pois-sabre (Canavalia ensiformis) peuvent germer avec très peu de précipitations ou d’irrigation tandis que d’autres telles que les citrouilles et les courges (Cucurbitaceae) nécessitent un approvisionnement en eau considérable 4 pour une germination réussie. Ces graines de culture pourraient être trempées dans l’eau avant le semis pour aider à l’absorption de l’eau des graines (imbibition; Gilroy, 1986).
La variabilité des conditions dans une pépinière
Figure 6. Plateau de semis avec plusieurs espèces et succès de germination variable par espèce. Source: Holly Sobetski
Lorsqu’ils travaillent dans une pépinière, les gens optimisent souvent l’espace des plateaux en semant deux cultures ou plus dans chaque plateau de semis. Bien que cela économise des ressources, les deux cultures peuvent avoir des besoins différents en lumière et en humidité, ce qui entraîne une germination plus faible pour une ou plusieurs cultures dans le plateau (Figure 6). Si deux espèces ou plus sont cultivées dans le même plateau de semis, assurez-vous qu’elles ont des exigences et des schémas de croissance similaires.
Traitement post-récolte des semences
La germination et le succès des semis peuvent être altérés par une mauvaise manipulation post-récolte des graines pendant la production. Si le producteur a manipulé les graines avec brutalité pendant la récolte, le battage et le vannage, ou le nettoyage, le tégument (péricarpe) peut avoir été fissuré ou endommagé, permettant à l’humidité de pénétrer dans la graine et diminuant la durée de vie et la vigueur de la graine. Vous devez recevoir les semences des fournisseurs en toute sécurité et rapidement. Les graines doivent être complètement propres, exemptes de pulpe de fruit qui peut pourrir et causer des infections fongiques, et exemptes de graines de mauvaises herbes ou de balles.
L’évaluation de la qualité des semences
Viabilité des semences
Figure 7. Tests simples de germination de haricots en utilisant une serviette en papier humide (à gauche) ou en semant directement dans le sol (à droite). Source: Stacy Swartz
La viabilité des semences est une mesure du nombre de graines vivantes et se rapporte au nombre de graines qui pourraient se développer en plants productives dans les conditions de terrain des agriculteurs (Bicksler, 2011). Plus la viabilité de vos semences est grande, moins il en faudra pour établir le nombre souhaité de plants dans le champ ou en pépinière. Le moyen le plus courant d’évaluer la viabilité consiste à effectuer un test de germination (Figure 7).
La vigueur des graines
Figure 8. Graine malformée de gombo (Abelmoschus esculentus) dont la pousse émerge avant la racine. Source: Stacy Swartz
La vigueur des graines se rapporte à la capacité globale des graines à bien pousser dans une gamme de conditions et de stress au champ. Cela peut être évalué, en partie, en notant le pourcentage de germination chaque jour et en notant le nombre de jours pour atteindre 50 % de germination. Un autre indicateur de la vigueur des graines est le pourcentage de semis normaux. Les semis normaux ne sont pas rabougris et ont des racines et des pousses bien développées (Figure 8). Il est possible d’effectuer des tests de germination dans le sol des champs des agriculteurs, mais ce n’est pas toujours pratique et les facteurs liés aux maladies et aux ravageurs peuvent rendre les résultats difficiles à interpréter. Testez régulièrement la germination des semences stockées (au moins une fois par an) pour évaluer leur viabilité dans le temps. Cela vous indiquera la vitesse à laquelle la vitalité des semences se détériore. Pour plus de détails sur la manière de réaliser des tests de germination simples, voir la Note de ECHO pour l’Asie n°11 [http://edn.link/an11].
Qu’est ce qui n’a pas marché? Tableau diagnostique
| Problème | Possible cause |
|---|---|
| Pas de pousse | Semence non viable, malade, semée trop profondément, trop arrosée ou sous-arrosée |
| Germination lente | Sol trop froid, pas assez d'eau |
| Les semis sont jaunes et longs | Trop peu de lumière, trop chaud |
| Les semis sont longs | Trop d'eau, trop peu de lumière |
| Les semis s'effondrent au niveau du sol | Fonte des semis, favorisée par une faible luminosité et un sol trop chaud ou humide |
| Les semis sont rabougris | Trop peu d'eau, pucerons |
| Les semis sont sains mais poussent lentement | Pas assez d'espace dans le sol pour les racines |
Références:
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Ashworth, S. 2002. Seed to Seed: Seed Saving and Growing Techniques for Vegetable Gardeners [Graine à graine : techniques de conservation et de culture des semences pour les jardiniers maraîchers]. Échange de conservateurs de semences.
Bicksler, A.J. 2011. Testing Seed Viability Using Simple Germination Tests [Test de la viabilité des semences à l’aide de tests de germination simples]. Notes de ECHO pour l’Asie n° 11.
da Silva, E.A.A, D.L.B. de Melo, A.C. Davide, N. de Bode, G.B. Abrue, J.M.R Faria, et H.W.M. Hilhorst. 2007. Germination Ecophysiology of Annona crassiflora seeds [Écophysiologie de la germination des graines d’Annona crassiflora]. Annals of Botany, 99(5):823-830.
Dhanvantari, B.N. 1994. Further studies on seed treatment for tomato bacterial canker [Études complémentaires sur le traitement des semences contre le chancre bactérien de la tomate]. Proceedings of the 10th Annual Tomato Disease Workshop, 49-51.
Ekpo, E.J.A., et K.M. Banjoko. 1994. Efficacy of Fernasan D and wood ash in the control of seed-borne fungi, pre-emergence mortality and seedling blight of maize [Efficacité du Fernasan D et de la cendre de bois dans la lutte contre les champignons transmis par les semences, la mortalité en pré-émergence et la brûlure des semis de maïs]. Discovery and Innovation, 6(1):84-88.
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